Оценка эффективности нефропротективной стероидной терапии с помощью анализа концентраций новых маркеров почечного повреждения при дистанционной ударно-волновой литотрипсии у детей

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. На протяжении нескольких десятилетий дистанционная ударно-волновая литотрипсия является лидирующим методом хирургического лечения конкрементов верхних мочевыводящих путей. Ключевой причиной такого широкого распространения стала минимальная степень инвазии в совокупности с высокой эффективностью. Однако доказано, что исходом каждого сеанса литотрипсии является острое повреждение почек. В настоящий момент нет терапевтической стратегии, направленной на защиту почечной паренхимы от патологического воздействия энергии ударной волны.

Цель. Оценить нефропротективное действие преднизолона на основании анализа динамических концентраций биомаркеров повреждения почек при проведении дистанционной ударно-волновой литотрипсии у детей.

Методы. В исследовании участвовали 108 детей с уролитиазом, каждому из которых был проведён сеанс дистанционной ударно-волновой литотрипсии. Пациентов разделили на 2 группы по 54 участника в каждой. Участников контрольной группы лечили по стандартному протоколу. Участники исследуемой группы помимо традиционной терапии перорально принимали преднизолон в дозе 0,5 мг/кг 1 раз в сут в течение 2 дней до сеанса дистанционной ударно-волновой литотрипсии и за 2 ч до операции. У всех пациентов забирали мочу и кровь: до операции, через 45 мин. и через 24 ч после операции с последующим определением концентрации биомаркеров.

Результаты. Концентрации биомаркеров в моче пациентов исследуемой и контрольной групп различались статистически значимо. Наиболее выраженные изменения отмечены через 45 мин. после операции. У пациентов контрольной группы выявлено статистически значимое повышение концентраций всех исследуемых биомаркеров в моче. У детей исследуемой группы концентрация молекулы повреждения почек-1 не менялась, а концентрации липокалина, ассоциированного с желатиназой нейтрофилов, тканевого ингибитора металлопротеиназы-2 и печёночной формы белка, связывающего жирные кислоты повышались статистически значимо меньше, чем у пациентов контрольной группы. Концентрация интерлейкина 18 в сыворотке крови пациентов контрольной группы повышалась статистически значимо, а у пациентов исследуемой группы — статистически незначимо.

Заключение. Статистически значимое снижение концентраций исследуемых биомаркеров, и, следовательно, степени почечного повреждения в исследуемой группе может стать основанием для назначения глюкокортикоидов в качестве медикаментозного сопровождения при проведении дистанционной ударно-волновой литотрипсии у детей.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Сергей Николаевич Зоркин

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: zorkin@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0002-4038-1472
SPIN-код: 4762-8837

доктор медицинских наук, профессор

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Олег Даниилович Никулин

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Автор, ответственный за переписку.
Email: dr.nikulin.oleg@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3640-9994
SPIN-код: 9310-2660

MD

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Елена Леонидовна Семикина

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: semikina@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0001-8923-4652
SPIN-код: 3647-4967

доктор медицинских наук, профессор

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Алексей Николаевич Цыгин

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: tsygin@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0001-6301-9313
SPIN-код: 7948-5065

доктор медицинских наук, профессор

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Марина Андреевна Сновская

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: snows@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-5263-6743
SPIN-код: 9899-1095

кандидат медицинских наук

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Анастасия Михайловна Милованова

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: milovanova@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0003-1615-2044
SPIN-код: 8260-5227

кандидат медицинских наук

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Дмитрий Сергеевич Шахновский

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: shakhnovski@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0003-2883-2493
SPIN-код: 4946-0848

MD

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Римир Радикович Баязитов

Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей

Email: krasik17@yandex.ru
SPIN-код: 5506-6828

кандидат медицинских наук

Россия, 119991, Москва, Ломоносовский пр-т, д. 2, стр. 1

Список литературы

  1. Talso M., Tefik T., Mantica G., et al. Extracorporeal shockwave lithotripsy: Current knowledge and future perspectives // Minerva Urol Nefrol. 2019. Vol. 71, N 4. P. 365–372. doi: 10.23736/S0393-2249.19.03415-5
  2. Зоркин С.Н., Никулин О.Д., Шахновский Д.С. Дистанционная ударно-волновая литотрипсия в лечении мочекаменной болезни у детей: виды и возможности // Детская хирургия. Журнал им. Ю.Ф. Исакова. 2022. Т. 26, № 6. С. 321–326. EDN: IYZCXD doi: 10.55308/1560-9510-2022-26-6-321-326
  3. Hughes S.F., Jones N., Thomas-Wright S.J., et al. Shock wave lithotripsy, for the treatment of kidney stones, results in changes to routine blood tests and novel biomarkers: A prospective clinical pilot-study // Eur J Med Res. 2020. Vol. 25, N 1. P. 18. doi: 10.1186/s40001-020-00417-2
  4. Milišić E., Alić J., Zvizdić Z., et al. Urinary neutrophil gelatinase-associated lipocalin level as a biomarker of acute kidney injury following extracorporeal shock wave lithotripsy // Cent Eur J Urol. 2021. Vol. 74, N 4. P. 579–587. EDN: DPGUHH doi: 10.5173/ceju.2021.0174
  5. Назаров Т.Х., Комяков Б.К., Рычков И.В., и др. Роль маркеров острого повреждения почек при проведении литотрипсии конкрементов высокой плотности // Урология. 2019. № 1. С. 23–27. EDN: FKKLMH doi: 10.18565/urology.2019.1.23-27
  6. Wołyniec W., Ratkowski W., Renke J., Renke M. Changes in novel AKI biomarkers after Exercise. A systematic review // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N 16. P. 5673. EDN: VGZRZK doi: 10.3390/ijms21165673
  7. Казаченко А.В., Войтко Д.А., Просянников М.Ю., и др. Современные маркеры определения функциональной способности почек в урологической практике // Экспериментальная и клиническая урология. 2023. Т. 16, № 1. С. 174–187. EDN: GPAHOJ doi: 10.29188/2222-8543-2023-16-1-174-187
  8. Clark D.L., Connors B.A., Evan A.P., et al. Localization of renal oxidative stress and inflammatory response after lithotripsy // BJU Int. 2009. Vol. 103, N 11. P. 1562–1568. doi: 10.1111/j.1464-410X.2008.08260.x
  9. Leedahl D.D., Frazee E.N., Schramm G.E., et al. Derivation of urine output thresholds that identify a very high risk of AKI in patients with septic shock // Clin J Am Soc Nephrol. 2014. Vol. 9, N 7. P. 1168–1174. doi: 10.2215/CJN.09360913
  10. Sharma A., Mucino M.J., Ronco C. Renal functional reserve and renal recovery after acute kidney injury // Nephron Clin Pract. 2014. Vol. 127, N 1-4. P. 94–100. doi: 10.1159/000363721
  11. Ronco C., Bellomo R., Kellum J. Understanding renal functional reserve // Int Care Med. 2017. Vol. 43, N 6. P. 917–920. EDN: NBAHCO doi: 10.1007/s00134-017-4691-6
  12. Szumilas D., Owczarek A.J., Brzozowska A., et al. The value of urinary NGAL, KIM-1, and IL-18 measurements in the early detection of kidney injury in oncologic patients treated with cisplatin-based chemotherapy // Int J Mol Sci. 2024. Vol. 25, N 2. P. 1074. doi: 10.3390/ijms25021074
  13. Spasojević-Dimitrijeva B., Kotur-Stevuljević J., Dukić M., et al. Serum neutrophil gelatinase-associated lipocalin and urinary kidney injury molecule-1 as potential biomarkers of subclinical nephrotoxicity after gadolinium-based and iodinated-based contrast media exposure in pediatric patients with normal kidney function // Med Sci Monit. 2017. N 23. P. 4299–4305. doi: 10.12659/msm.903255
  14. Breglia A., Godi I., Virzì G.M., et al. Subclinical contrast-induced acute kidney injury in patients undergoing cerebral computed tomography // Cardiorenal Med. 2020. Vol. 10, N 2. P. 125–136. doi: 10.1159/000505422
  15. Scridon A., Somkereki C., Nicoară T.R., et al. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin monitoring reveals persistent subclinical kidney injury following intraarterial administration of iodinated contrast agents // Sci Rep. 2022. Vol. 12, N 1. P. 19464. EDN: UALKHC doi: 10.1038/s41598-022-24169-7
  16. Dalton R.N. Serum creatinine and glomerular filtration rate: Perception and reality // Clin Chem. 2010. Vol. 56, N 5. P. 687–689. doi: 10.1373/clinchem.2010.144261
  17. Никулин О.Д., Зоркин С.Н., Семикина Е.Л., и др. Биомаркеры острого повреждения почек при дистанционной ударно-волновой литотрипсии у детей // Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2023. Т. 102, № 5. С. 181−190. doi: 10.24110/0031-403X-2023-102-5-181-190
  18. Yuan S.M. Acute kidney injury after cardiac surgery: Risk factors and novel biomarkers // Braz J Cardiovasc Surg. 2019. Vol. 34, N 3. P. 352–360. doi: 10.21470/1678-9741-2018-0212
  19. Zhang Y.L., Qiao S.K., Wang R.Y., Guo X.N. NGAL attenuates renal ischemia/reperfusion injury through autophagy activation and apoptosis inhibition in rats // Chem Biol Interact. 2018. N 289. P. 40–46. doi: 10.1016/j.cbi.2018.04.018
  20. Kachko A., Costafreda M.I., Zubkova I., et al. Determinants in the Ig variable domain of human HAVCR1 (TIM-1) are required to enhance hepatitis C virus entry // J Virol. 2018. Vol. 92, N 6. P. e01742-17. EDN: YFLEPB doi: 10.1128/JVI.01742-17
  21. Мирошкина И.В., Грицкевич А.А., Байтман Т.П., и др. Роль маркеров острого повреждения почки в оценке функции почки при ее ишемии // Экспериментальная и клиническая урология. 2018. № 4. С. 114–121. EDN: VRTKPJ
  22. Yamamoto T., Noiri E., Ono Y., et al. Renal L-type fatty acid–binding protein in acute ischemic injury // J Am Society Nephrol. 2007. Vol. 18, N 11. P. 2894–2902. doi: 10.1681/ASN.2007010097
  23. Schrezenmeier E.V., Barasch J., Budde K., et al. Biomarkers in acute kidney injury: Pathophysiological basis and clinical performance // Acta Physiologica. 2017. Vol. 219, N 3. P. 554–572. EDN: YVTLYF doi: 10.1111/apha.12764
  24. Lin X., Yuan J., Zhao Y., Zha Y. Urine interleukin-18 in prediction of acute kidney injury: A systemic review and meta-analysis // J Nephrol. 2015. Vol. 28, N 1. P. 7–16. EDN: YZOJLD doi: 10.1007/s40620-014-0113-9
  25. Wang S., Zhang Z., Wang J., Miao H. MiR-107 induces TNF-α secretion in endothelial cells causing tubular cell injury in patients with septic acute kidney injury // Biochem Biophys Res Commun. 2017. Vol. 483, N 1. P. 45–51. doi: 10.1016/j.bbrc.2017.01.013
  26. Fagerberg L., Hallström B.M., Oksvold P., et al. Analysis of the human tissue-specific expression by genome-wide integration of transcriptomics and antibody-based proteomics // Mol Cell Proteomics. 2014. Vol. 13, N 2. P. 397–406. EDN: MTOMUS doi: 10.1074/mcp.M113.035600
  27. Ortega L.M., Heung M. The use of cell cycle arrest biomarkers in the early detection of acute kidney injury. Is this the new renal troponin? // Nefrología. 2018. Vol. 38, N 4. P. 361–367. doi: 10.1016/j.nefro.2017.11.013
  28. Emlet D.R., Pastor-Soler N., Marciszyn A., et al. Insulin-like growth factor binding protein 7 and tissue inhibitor of metalloproteinases-2: Differential expression and secretion in human kidney tubule cells // Am J Physiol Renal Physiol. 2017. Vol. 312, N 2. P. F284–296. EDN: YXCIST doi: 10.1152/ajprenal.00271.2016
  29. Johnson A.C., Zager R.A. Mechanisms underlying increased TIMP2 and IGFBP7 urinary excretion in experimental AKI // J Am Society Nephrol. 2018. Vol. 29, N 8. P. 2157–2167. doi: 10.1681/ASN.2018030265
  30. Guzeloglu M., Yalcinkaya F., Atmaca S., et al. The beneficial effects of tadalafil on renal ischemia-reperfusion injury in rats // Urol Int. 2011. Vol. 86, N 2. P. 197–203. doi: 10.1159/000321927
  31. Gasanov F., Aytac B., Vuruskan H. The effects of tadalafil on renal ischemia reperfusion injury: An experimental study // Bosn J Basic Med Sci. 2011. Vol. 11, N 3. P. 158–162. doi: 10.17305/bjbms.2011.2567
  32. Danisoglu M.E., Aytac B., Kilicaslan H., et al. Reduction of shock wave lithotripsy-induced renal tubular injury by tadalafil // Bratislava Med J. 2013. Vol. 114, N 11. P. 616–620. doi: 10.4149/BLL_2013_131
  33. Ozmerdiven G., Vuruskan B.A., Kaygisiz O., Vuruskan H. Protective effects of diltiazem and tadalafil on shock wave-induced kidney injury in rats // Bratislava Med J. 2017. Vol. 118, N 4. P. 228–232. doi: 10.4149/BLL_2017_045
  34. Park H.K., Lee H.W., Lee K.S., et al. Preventive effects of COX-2 inhibitor, celecoxib on renal tubular injury induced by shock wave lithotripter // Urol Res. 2010. Vol. 38, N 4. P. 223–228. doi: 10.1007/s00240-009-0243-z
  35. Al-Awadi K.A., Kehinde E.O., Loutfi I., et al. Treatment of renal calculi by lithotripsy: Minimizing short-term shock wave induced renal damage by using antioxidants // Urol Res. 2008. Vol. 36, N 1. P. 51–60. doi: 10.1007/s00240-007-0126-0
  36. Armaly Z., Artol S., Jabbour A.R., et al. Impact of pretreatment with carnitine and tadalafil on contrast-induced nephropathy in CKD patients // Ren Fail. 2019. Vol. 41, N 1. P. 976–986. doi: 10.1080/0886022X.2019.1669459
  37. Heybeli C., Canaslan K., Oktan M.A., et al. Acute kidney injury following colistin treatment in critically-ill patients: May glucocorticoids protect? // J Chemotherapy. 2021. Vol. 33, N 2. P. 85–94. doi: 10.1080/1120009X.2020.1770027
  38. Ying P., Yang C., Wu X., et al. Effect of hydrocortisone on the 28-day mortality of patients with septic acute kidney injury // Ren Fail. 2019. Vol. 41, N 1. P. 794–799. doi: 10.1080/0886022X.2019.1658605
  39. González E., Gutiérrez E., Galeano C., et al. Early steroid treatment improves the recovery of renal function in patients with drug-induced acute interstitial nephritis // Kidney Int. 2008. Vol. 73, N 8. P. 940–946. doi: 10.1038/sj.ki.5002776
  40. Fontana J., Vogt A., Hohenstein A., et al. Impact of steroids on the inflammatory response after ischemic acute kidney injury in rats // Indian J Nephrol. 2017. Vol. 27, N 5. P. 365–371. doi: 10.4103/ijn.IJN_40_17
  41. Prendecki M., Tanna A., Salama A.D., et al. Long-term outcome in biopsy-proven acute interstitial nephritis treated with steroids // Clin Kidney J. 2017. Vol. 10, N 2. P. 233–239. doi: 10.1093/ckj/sfw116
  42. Friedewald J.J., Rabb H. Inflammatory cells in ischemic acute renal failure // Kidney Int. 2004. Vol. 66, N 2. P. 486–491. doi: 10.1111/j.1523-1755.2004.761_3.x
  43. Choi H.M., Jo S.K., Kim S.H., et al. Glucocorticoids attenuate septic acute kidney injury // Biochem Biophys Res Commun. 2013. Vol. 435, N 4. P. 678–684. EDN: YDKRCX doi: 10.1016/j.bbrc.2013.05.042
  44. Hall R.I., Smith M.S., Rocker G. The systemic inflammatory response to cardiopulmonary bypass: Pathophysiological, therapeutic, and pharmacological considerations // Anesth Analg. 1997. Vol. 85, N 4. P. 766–782. doi: 10.1097/00000539-199710000-00011
  45. Kawamura T., Inada K., Nara N., et al. Influence of methylprednisolone on cytokine balance during cardiac surgery // Crit Care Med. 1999. Vol. 27, N 3. P. 545–548. doi: 10.1097/00003246-199903000-00033
  46. Toledo-Pereyra L.H., Lin C.Y., Kundler H., Replogle R.L. Steroids in heart surgery: A clinical double-blind and randomized study // Am Surg. 1980. Vol. 46, N 3. P. 155–160.
  47. Whitlock R.P., Young E., Noora J., et al. Pulse low dose steroids attenuate post-cardiopulmonary bypass SIRS; SIRS I // J Surg Res. 2006. Vol. 132, N 2. P. 188–194. doi: 10.1016/j.jss.2006.02.013
  48. Weis F., Beiras-Fernandez A., Schelling G., et al. Stress doses of hydrocortisone in high-risk patients undergoing cardiac surgery: Effects on interleukin-6 to interleukin-10 ratio and early outcome // Crit Care Med. 2009. Vol. 37, N 5. P. 1685–1690. doi: 10.1097/CCM.0b013e31819fca77
  49. Schurr U.P., Zünd G., Hoerstrup S.P., et al. Preoperative administration of steroids: Influence on adhesion molecules and cytokines after cardiopulmonary bypass // Ann Thorac Surg. 2001. Vol. 72, N 4. P. 1316–1320. doi: 10.1016/s0003-4975(01)03062-4
  50. Semedo P., Palasio C.G., Oliveira C.D., et al. Early modulation of inflammation by mesenchymal stem cell after acute kidney injury // Int Immunopharmacol. 2009. Vol. 9, N 6. P. 677–682. doi: 10.1016/j.intimp.2008.12.008
  51. Zhang J., Yao Y., Xiao F., et al. Administration of dexamethasone protects mice against ischemia/reperfusion induced renal injury by suppressing PI3K/AKT signaling // Int J Clin Exp Pathol. 2013. Vol. 6, N 11. P. 2366–2375.
  52. Acar G., Akcay A., Sayarlioglu M., et al. Assessment of atrial conduction time in patients with familial Mediterranean fever // Pacing Clin Electrophysiol. 2009. Vol. 32, N 3. P. 308–313. doi: 10.1111/j.1540-8159.2008.02237.x

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Влияние дистанционной ударно-волновой литотрипсии на концентрацию липокалина, ассоциированного с желатиназой нейтрофилов, в моче: NGAL — липокалин, ассоциированный с желатиназой нейтрофилов.

Скачать (79KB)
3. Рис. 2. Влияние дистанционной ударно-волновой литотрипсии на концентрацию молекулы повреждения почек-1 в моче: KIM-1 — молекула повреждения почек-1.

Скачать (73KB)
4. Рис. 3. Влияние дистанционной ударно-волновой литотрипсии на концентрацию тканевого ингибитора металлопротеиназы-2 в моче: TIMP-2 — тканевой ингибитор металлопротеиназы-2.

Скачать (83KB)
5. Рис. 4. Влияние дистанционной ударно-волновой литотрипсии на концентрацию печёночной формы белка, связывающего жирные кислоты, в моче: L-FABP — печёночная форма белка, связывающего жирные кислоты.

Скачать (89KB)
6. Рис. 5. Влияние дистанционной ударно-волновой литотрипсии на концентрацию интерлейкина 18 в сыворотке крови: IL-18 — интерлейкин 18.

Скачать (81KB)

© Зоркин С.Н., Никулин О.Д., Семикина Е.Л., Цыгин А.Н., Сновская М.А., Милованова А.М., Шахновский Д.С., Баязитов Р.Р., 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах